Research press release




DNA二重らせんは、アデニン(A)、グアニン(G)、シトシン(C)、チミン(T)の合計4種類の化学塩基(「文字」)からなり、CとG、AとTが対を形成するように配列されている。2016年にDavid Liuたちの研究グループは、遺伝コードの1文字を標的として修飾するCRISPR-Cas9関連の一塩基編集法の開発について記述した論文を発表した。この一塩基編集システムは、従来の方法より効率的に一塩基変異の修正を行うことができ、想定外のDNA修飾を起こしにくく、ゲノム中でのランダムな欠失や挿入が非常に少ないため歓迎された。そして、CRISPR-Cas9のような編集法では、一般的にDNA二本鎖の切断が生じる。ただし、当時のシステムはG-C塩基対からT-A塩基対への転位しかできなかった。今回のLiuたちの研究論文では、A-T塩基対からG-C塩基対への転位を可能にした新しいクラスのアデニン一塩基エディター(ABE)について記述されている。


A new class of 'base editors' - programmable protein machines that rearrange the atoms of one DNA base to resemble a different base in the genome of living cells - now make it possible to individually replace all four bases of DNA selectively and efficiently, without causing any double-stranded DNA breaks. These new base editors, reported online this week in Nature, could potentially be used to correct single-base mutations that cause genetic diseases and to introduce disease-suppressing single-base mutations, raising hopes that they might contribute to our understanding of genetic disease and the search for new therapies.

The DNA double helix is made of four chemical bases or ‘letters’ - adenine (A), guanine (G), cytosine (C) and thymine (T) - arranged so that C pairs with G, and A with T. Last year, David Liu and colleagues described the development of a CRISPR-Cas9-related base editing method for targeting and modifying single letters of the genetic code. The system was welcomed because it was more efficient than previous methods at correcting single-base mutations and less prone to generating undesired DNA modifications without causing random deletions or insertions in the genome - a common outcome of methods, such as CRISPR-Cas9, that make double-stranded breaks in DNA. However, researchers were then only able to convert G-C base pairs to T-A base pairs. In the new study, Liu and co-authors describe a new class of adenine base editors (ABEs) that enable A-T base pairs to be converted to G-C base pairs.

About half of all known disease-related single-base-pair changes involve the conversion of a wild-type G-C base pair to a mutant A-T base pair, so the new system offers the chance to reverse many such mutations. The ABEs are shown to work on DNA in both bacterial and human cells. In human cells, they can introduce the desired genetic change at a wide range of target regions with an efficiency of around 50%, higher than that of other genome-editing methods, and with virtually no undesired by-products, such as random insertions, deletions or other mutations.

doi: 10.1038/nature24644

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